確保實驗環境整潔，所需儀器設備如凈化工作臺、離心機、恒溫水浴箱、培養箱等處于良好狀態。

1準備適量的新鮮培養基，置于37℃培養箱中預熱。

2取出凍存管

從液氮罐或-80℃冰箱中迅速取出凍存管，注意佩戴防護手套和護目鏡，以防凍傷和液氮濺射。

3快速解凍

將凍存管直接放入預熱至37℃的恒溫水浴鍋中，不時搖動以加速融化。注意不要讓水浴鍋的水接觸到凍存管的管口，以防污染。

融化時間應控制在2分鐘內，以減少細胞在解凍過程中受到的損傷。

4消毒與轉移

解凍后，用75%酒精擦拭凍存管外部進行消毒，晾干后打開瓶蓋。

將融化的細胞懸液用吸管或移液槍轉移至含有適量培養基的離心管中。

5離心與重懸

根據細胞類型和離心機的要求，選擇合適的離心速度和時間進行離心。一般情況下，低速離心5分鐘即可。

離心后，棄去上清液中的DMSO等冷凍保護劑，加入新鮮培養基重懸細胞。

6接種與培養

將重懸后的細胞接種至培養皿或培養瓶中，置于37℃、5% CO?的培養箱中進行培養。

根據細胞類型和生長情況，適時更換新鮮培養基，去除死細胞和代謝廢物。

注意事項

1無菌操作

整個復蘇過程必須嚴格進行無菌操作，以防止細胞污染。

2控制時間

解凍時間不宜過長，以免細胞受到損傷。同時，解凍后的細胞應盡快接種至培養皿中，以減少在常溫下的暴露時間。

3調整細胞濃度

如果復蘇后的細胞濃度過低，可以通過離心后調整細胞濃度來提高細胞的生長速度。

4觀察與記錄

復蘇后應定期觀察細胞的生長情況，包括形態、密度和生長速度等。同時，詳細記錄復蘇細胞的名稱、數量、復蘇時間、存放部位等信息，以便后續跟蹤和管理。

5使用合適的培養基

根據細胞類型和復蘇后的培養需求選擇合適的培養基，以保證細胞能夠正常生長。